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PCR擴(kuò)增得率低或者無擴(kuò)增?一篇干貨解決所有問題

發(fā)布時(shí)間:2020-06-09瀏覽次數(shù):1050返回列表

PCR實(shí)驗(yàn)時(shí),我們有時(shí)候會(huì)遇到目的基因得率低,或者根本擴(kuò)不出來的情況,不管是PCR的實(shí)驗(yàn)王zhe,還是初級實(shí)驗(yàn)小白,都需要逐個(gè)排查問題,那么我們需要考慮哪些因素呢?




今天這一篇干貨,幫您徹底解決問題。

先考慮的問題,是不是DNA模板的問題呢?

    如果模板質(zhì)量太差?

那么檢查DNA模板的純度和完整度,保證你的模板中不含有PCR抑制劑。在分離DNA時(shí),盡量減少對DNA的切斷或切刻。如有需要,可通過凝膠電泳檢測模板DNA完整性。

將DNA保存于分子級別的水或TE緩沖液 (pH 8.0)中,防止被核酸酶降解。

    如果是模板濃度太低?

建議使用DNA純化試劑盒分離模板DNA時(shí),應(yīng)嚴(yán)格遵循試劑盒生產(chǎn)商的建議。查閱用戶手冊和疑難問題指南,改善較低的DNA質(zhì)量。如果采用化學(xué)或酶促DNA純化方案,應(yīng)確保無PCR抑制劑殘留,如苯酚、EDTA和蛋白酶K。使用70%乙醇再純化或沉淀和洗滌DNA,去除可能會(huì)抑制DNA聚合酶的殘留鹽分或離子(如, K+, Na+等)。選擇具有高合成能力的DNA聚合酶,這類聚合酶對土壤、血液和植物組織攜帶的常見PCR抑制劑具有較好的耐受性。

    如果是DNA模板量不足?

建議檢查 DNA起始量 ,如有需要適當(dāng)增加起始量。 選擇具有高靈敏度 的DNA聚合酶用于擴(kuò)增。適當(dāng)增加PCR循環(huán)數(shù)。

    如果需要擴(kuò)增的目的片段比較復(fù)雜(如,高GC含量或含二級結(jié)構(gòu))?、

建議選擇具有相應(yīng)的擴(kuò)增試劑盒,比如適合高GC含量片段的PCR試劑盒?;蛘哌x擇具有高合成能力的DNA聚合酶,這類酶對DNA模板的親和力較高,geng適合擴(kuò)增困難靶標(biāo)。 使用 PCR添加劑或輔助溶劑 ,促進(jìn)富含GC的DNA和具有二級結(jié)構(gòu)的序列變性。增加 變性時(shí)間或溫度 ,從而解離雙鏈DNA模板。

    如果目的片段太長?

建議直接使用長片段設(shè)計(jì)的PCR試劑盒,或者確認(rèn)所選DNA聚合酶的長片段擴(kuò)增能力。使用專為 長片段PCR設(shè)計(jì)的DNA聚合酶。選擇具有高合成能力的DNA聚合酶,這類酶能夠在短時(shí)間內(nèi)擴(kuò)增長片段。降低退火和延伸溫度,促進(jìn)引物結(jié)合和提高酶熱穩(wěn)定性。根據(jù)擴(kuò)增子長度,增加延伸時(shí)間。

或者是引物的問題?

    考慮引物濃度是不是不是zui優(yōu)的?

建議預(yù)實(shí)驗(yàn)優(yōu)化引物濃度(范圍通常為0.1–1 μM)。對于長片段PCR和使用簡并引物的PCR,zui小起始濃度為 0.5μM。

    引物設(shè)計(jì)有問題?

可以使用多種引物設(shè)計(jì)軟件比如Primer Premier等,或者使用在線 引物設(shè)計(jì)工具 。確保引物針對目的片段具有特異性。 確認(rèn)引物與正確的目標(biāo)DNA鏈互補(bǔ)。

也許是其他試劑的問題?

    MgCl2 濃度太低?

鎂離子(Mg2+)作為DNA聚合酶活性的輔助因子,有助于聚合期間dNTP的結(jié)合。酶活性位點(diǎn)處的鎂離子可催化引物的3′-OH與dNTP的磷酸基團(tuán)間形成磷酸二酯鍵。此外, Mg2+ 能夠穩(wěn)定磷酸鹽骨架上的負(fù)電荷,從而促進(jìn)引物與DNA模板形成復(fù)合物。在PCR中,標(biāo)準(zhǔn)的 Mg2+ 終濃度范圍為1–4 mM,建議優(yōu)化滴定增量為0.5 mM。 Mg2+ 濃度過低會(huì)降低聚合酶活性,導(dǎo)致PCR產(chǎn)物較少或無PCR產(chǎn)物。另一方面, Mg2+ 濃度過高則會(huì)提高引物-模板復(fù)合物的穩(wěn)定性,產(chǎn)生非特異性PCR產(chǎn)物,并增加由dNTP錯(cuò)誤插入導(dǎo)致的復(fù)制錯(cuò)誤。

還有可能是PCR循環(huán)設(shè)置不理想呢?

    變性效果不理想?

建議優(yōu)化DN變性時(shí)間和溫度。變性時(shí)間短、溫度低可能無法獲得良好的雙鏈DNA模板解離效果。相反,變性時(shí)間長、溫度高可能會(huì)降低酶活性。

    退火效果不理想?

盡量使用 梯度熱循環(huán)儀 ,以1–2°C增量逐步優(yōu)化退火溫度。zui佳退火溫度通常比zui低引物Tm低 3–5°C。當(dāng)使用 PCR 添加劑或輔助溶劑 時(shí),應(yīng)調(diào)整退火溫度。使用DNA聚合酶在其zui佳緩沖液中的 推薦退火溫度 。DNA聚合酶不同,則引物對的退火溫度也不同。

    延伸效果不理想?

選擇適合于擴(kuò)增子長度的延伸時(shí)間。

在擴(kuò)增長片段(如,>10 kb)時(shí),降低延伸溫度(如,降至68°C)可保持酶活性。

使用具有 高合成能力 的DNA聚合酶,在較短的延伸時(shí)間內(nèi)也能實(shí)現(xiàn) 穩(wěn)定的擴(kuò)增 。

    PCR循環(huán)數(shù)不合適?

調(diào)整循環(huán)數(shù)(通常為23-35個(gè)循環(huán)),以獲得合適的PCR產(chǎn)物得率。如果DNA起始量低于10拷貝,則將循環(huán)數(shù)增加至40

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